| 前言 第一部分 实验室基本知识 一、实验室规则 二、实验室基本操作 三、实验记录与实验报告 四、实验误差与数据处理 五、植物样品的采取、处理与保存 六、缓冲溶液 第二部分 实验 第一章 糖 实验一 植物组织中糖含量的测定 实验二 还原糖含量的测定（3，5一二硝基水杨酸比色法） 实验三 糖的定量测定（蒽酮法） 第二章 氨基酸和蛋白质 实验四 氨基酸的纸层析 实验五 脯氨酸含量的测定 实验六 蛋白质及氨基酸的呈色反应 实验七 蛋白质的沉淀反应 实验八 蛋白质的两性反应和等电点的测定 实验九 蛋白质含量的测定 Ⅰ 双缩脲法测定蛋白质含量 Ⅱ 考马斯亮蓝染色法测定蛋白质含量 Ⅲ 紫外分光光度法测定蛋白质含量 Ⅳ Folin一酚试剂法（Lowry法）测定蛋白质含量 实验十 细胞色素C的制备和测定 实验十一 SDS一聚丙烯酰胺凝胶电泳法（SDS—PAGE）测定蛋白质相对分子质量 实验十二 凝胶层析法测定蛋白质相对分子质量 第三章 酶和维生素 实验十三 酶的特异性 实验十四 温度、pH值对淀粉酶活性的影响 Ⅰ 温度对淀粉酶活性的影响 Ⅱ pH值对淀粉酶活性的影响 实验十五 过氧化氢酶活性的测定 实验十六 过氧化物酶活性的测定 实验十七 聚丙烯酰胺凝胶圆盘电泳测定过氧化物同工酶 实验十八 植物组织中硝酸还原酶活性的测定 实验十九 淀粉酶活性的测定 实验二十 酶浓度对酶促反应速度的影响——碱性磷酸酶活性的测定 实验二十一 底物浓度对酶促反应速度的影响——米氏常数的测定 实验二十二 溶菌酶的提取和系列性质测定 Ⅰ 溶菌酶的提取 Ⅱ 蛋白质浓度、酶活力测定一 Ⅲ 酶促动力学（Km，测定、脲的抑制） Ⅳ 酶的最适pH值 Ⅴ 酶的最适温度 Ⅵ 分子筛层析测酶相对分子质量 Ⅶ SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳测定酶相对分子质量及其纯度鉴定 实验二十三 维生素c含量的测定 第四章 核酸 实验二十四 DNA的制备 Ⅰ DNA的制备及其含量测定（浓盐分离法） Ⅱ 植物组织中核酸的提取及定量测定 实验二十五 DNA的含量测定 Ⅰ 紫外吸收法测定DNA含量 Ⅱ 定磷法测定DNA含量 Ⅲ 二苯胺显色法测定DNA含量 实验二十六 离子交换柱层析分离核苷酸 第三部分 附录 一、离心技术 二、分光光度计说明与原理 三、常用蛋白质相对分子质量（Mt）标准参照物 四、常用缓冲溶液的配制方法 五、实验室中常用酸碱的密度和浓度 六、硫酸铵饱和度的常用表 |
内容加载中，请稍后...
商品评论（0条）